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    ATCC 的細胞

    更新時間:2022-11-03      點擊次數:3063

    來自ATCC的細胞培養(yǎng)指南(精簡版)

    每天對待細胞那真是捧在手里怕碎了,含在嘴里怕化了,看在眼里怕丟了。如果手里有一份來自機構ATCC的《細胞培養(yǎng)指南》,養(yǎng)細胞可就得心應手多了。下面是細胞培養(yǎng)指南(精簡版),值得收藏。

       綜述

    細胞要么在培養(yǎng)瓶表面貼壁生長(錨定依賴性)要么懸浮生長(非錨定依賴性)。細胞的生長和分裂,通常遵循一個由四個階段組成的特征性增長模式:停滯期,對數期(指數期),平穩(wěn)期(平臺期)和衰退期。

    停滯期——將細胞接種至培養(yǎng)瓶之后,細胞逐步恢復的同時,緩慢生長。

    對數期(指數期)——細胞進入一個對數生長的時期,一直持續(xù)到整個生長表面被占滿或細胞密度超過培養(yǎng)基提供營養(yǎng)的能力。

    平穩(wěn)期——細胞增殖減慢或停止。

    衰退期——如果不更換培養(yǎng)基且細胞數量不減少,細胞活力會下降,并出現細胞死亡。


    為了確?;盍Γz傳穩(wěn)定性和表型穩(wěn)定,必須使細胞保持在對數期。這意味著細胞需要在進入平穩(wěn)增長階段之前,或在單層細胞長成100%融合之前,或在懸浮細胞達到推薦的最大細胞密度之前定期進行傳代培養(yǎng)。為每個細胞系繪制生長曲線,對于測定該細胞系的生長特性是必要的。

    ~凍存細胞復蘇~


    培養(yǎng)一個新的細胞時要特別注意培養(yǎng)基一致性的問題。雖然大多數細胞系可以在不止一種培養(yǎng)基中生長,但是當培養(yǎng)基改變時,細胞的性質也會變化。來自于不同廠家的培養(yǎng)基,即使名字相同或類似,配方也略有差異。仔細閱讀說明書,配方,標簽,確保使用正確的培養(yǎng)基。

    細胞復蘇時,應以最快速度融化凍存的細胞溶液,然后迅速與*培養(yǎng)基混合,并接種到合適的細胞瓶中。


    復蘇程序

    1) 準備細胞培養(yǎng)容器(如T-75細胞瓶),加入至少10 ml適當的培養(yǎng)基,并平衡溫度及pH。

    2) 從液氮罐中取出凍存管,并在37℃(或適合該細胞的溫度)水浴中緩慢搖動至冰晶*融化(約2 min),注意解凍過程要迅速。

    3) 從水浴中取出凍存管,浸泡或者噴撒酒精消毒。后續(xù)的操作,需在無菌操作臺中,并保證嚴格無菌。

    4) 擰開凍存管蓋,將細胞懸液轉移至含有9ml*培養(yǎng)基的無菌離心管中。溫和離心(125g×10min),棄去上清去除凍存保護劑。注意不要擾動細胞層。加入1-2 ml*培養(yǎng)基重懸細胞,緩慢吹打使細胞團變松散。將細胞懸液轉移至含培養(yǎng)基的容器中充分混合。

    5) 24小時后,檢測細胞狀態(tài)。


    細胞傳代培養(yǎng)~


    單層貼壁細胞的傳代培養(yǎng)

    為了保證單層貼壁細胞的對數生長,需要定期傳代。當細胞生長接近指數生長后期(匯合率大約70%到90%),準備傳代。針對傳代過程,ATCC提供的產品說明中,會推薦細胞傳代分配比例和補充培養(yǎng)基策略。

    單層貼壁細胞傳代,需要打斷細胞之間的連接。對于比較松散的連接,猛擊培養(yǎng)瓶側壁,可以分離細胞。很多情況下,需要/EDTA的蛋白水解酶來消化。對于一些細胞系,需要采用刮等機械方法分離細胞。細胞分離成為單細胞懸液后,稀釋到適當的密度并轉移到新的培養(yǎng)瓶中,在適當的生長培養(yǎng)基中,細胞將再貼壁生長和分裂。

    由于每種細胞都是的,孵化時間和溫度、清洗次數或溶液配方可能會有所不同。分離過程中,應用顯微鏡密切觀察細胞,以防止細胞損傷。這個過程根據容器使用合適的培養(yǎng)體積。


    懸浮細胞的傳代培養(yǎng)

    相對于單層貼壁細胞來說,懸浮細胞的傳代更具有優(yōu)勢,單層貼壁細胞需要蛋白水解酶,會造成細胞損傷。而懸浮細胞可以使用稀釋的方法來傳代,細胞生長沒有延遲,對實驗室空間要求較小,傳代培養(yǎng)是線性放大的。比如細胞可以在發(fā)酵罐中培養(yǎng)。

    根據細胞類型,懸浮培養(yǎng)接種密度從2×10*4至5×10*5活細胞/ml。收獲時細胞密度2×10*6細胞/ml。如果細胞接種密度過低,他們將經歷增長延遲階段,增長非常緩慢甚至*死亡。如果細胞密度過高,細胞可能耗盡培養(yǎng)基中營養(yǎng),而突

    ~細胞凍存~

    隨著細胞被冷凍至冰點以下,懸液中冰晶和溶質的濃度有所增加。如果冷卻過程中,胞內水分可以滲出細胞,則可以減少胞內冰晶。通常1℃/min的降溫速度可以促進此過程。但是,水分的喪失會導致細胞收縮,當這種收縮達到一定程度,又會導致細胞活性的劇烈下降。冷凍保護劑,如甘油或者二甲基亞砜(DMSO),可以緩解這種效應。細胞凍存的標準程序是在含有冷凍保護劑的培養(yǎng)基中,將細胞緩慢冷凍至–70℃,然后將凍存管轉移到液氮中以保持低于–130℃的環(huán)境。

    有很多方法可以實現1℃/min的降溫速度。電腦控制的可編程電子降溫系統是好的方式,可以精確保持降溫速度。這也是ATCC采用的方法。但這種設備價格較高。比較經濟的方式是將凍存管放置于凍存盒中,在低于–70℃的冰箱中凍存24小時。之后再轉移至液氮長期儲存。

    以下程序適用于大多數細胞。凍存培養(yǎng)基的配方請參考細胞說明書。凍存時,細胞應處于指數生長期。


    凍存程序

    1) 凍存前先檢測細胞是否受到細菌、真菌、支原體和病毒的污染。如果確定有污染,應將該細胞銷毀。

    2) 凍存培養(yǎng)基由*培養(yǎng)基和5%D





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